1. Đặc tính Rhizopus stolonifer
Sự tác động của nấm này đến thực phẩm:
Rhizopus stolonifer có vẻ ngoài đặc biệt, với những mảng sợi nấm màu đen, mờ tạo cho nó một kết cấu mượt mà và chúng có màu trắng hoặc đen. Nấm này phát triển rất nhanh ở môi trường ẩm ướt, đặc biệt là trong điều kiện ẩm và ấm và chúng phát triển tốt nhất ở nhiệt độ từ 20 – 30oC, pH từ 3-7. Chúng có thể tìm thấy trên các thức ăn mục đốc, trái cây thối rửa, và các chất hữu cơ khác. Ngoài ra Rhizopus stolonifer xuất hiện trên các bề mặt dễ bị nhiễm mốc: bề mặt thiết bị nhà bếp, túi và hộp đựng thực phẩm hoặc các vật dụng như dao,...
    |
 |
| Hình 1. Nấm Rhizopus stolonifer phát triển trên bánh mỳ, cà chua và bề mặt dụng cụ |
Nguồn nhiễm vào thực phẩm:
Rhizopus stolonifer sản xuất enzyme phân giải các tinh bột, protein và lipit trong thực phẩm, làm giảm chất lượng và giá trị dinh dưỡng của thực phẩm. Rhizopus stolonifer sản xuất axit hữu cơ, gây ôi thiu và tạo hương vị khó chịu cho thực phẩm. Ngoài ra, Rhizopus stolonifer có khả năng sản xuất các chất độc hại cho sức khỏe sau khi ăn bao gồm axit có hại và mycotoxin. Và mycotoxin có thể gây ra các vấn đề sức khỏe nghiêm trọng cho con người như đau bụng hoặc viêm ruột. Một thành phần của Rhizopus stolonifer gọi là Rhizopuspi là một loại peptide có khả năng chống lại các loại vi khuẩn, nấm và vi rút, có thể có tiềm năng trong điều trị bệnh nhiễm trùng.
2. Ức chế Rhizopus stolonifer bằng chiết xuất tự nhiên
Ngày càng có nhiều nghiên cứu tập trung vào việc sử dụng các chiết xuất tự nhiên để ức chế sự hư hỏng sau thu hoạch ở trái cây và rau quả. Chitosan và polyphenol trong trà được nhắc đến thường xuyên hơn.
2.1. Ức chế Rhizopus stolonifer bằng Chitosan
Chitosan là một dẫn xuất khử acetyl của chitin mang điện tích dương, mang lại cho nó các đặc tính sinh lý và sinh học độc đáo để chống lại nấm, vi khuẩn và vi rút (Palma Guerrero và cs., 2008). Các trọng lượng phân tử khác nhau của chitosan có tác dụng khác nhau đối với Rhizopus stolonifer. Chitosan có trọng lượng phân tử thấp có tác dụng ức chế nhất định đối với sự phát triển của sợi nấm, chitosan có trọng lượng phân tử trung bình có tác dụng chính đối với việc giải phóng protein, làm tăng lượng protein, trong khi chitosan có trọng lượng phân tử cao có tác dụng đối với hình thái bào tử và sự nảy mầm (Guerra-Sánchez và cs, 2009). Ngoài ra, các nghiên cứu đã phát hiện ra rằng chitosan có thể ảnh hưởng đến tính thấm màng của Rhizopus stolonifer , dẫn đến tăng độ pH ngoại bào và ức chế hoạt động của H + -ATPase (García-Rincón và cs., 2010). Tuy nhiên, chitosan có những hạn chế như độ hòa tan kém trong nước, độ hòa tan trong axit axetic, cũng như tính ổn định và tính chất cơ học không đầy đủ, điều này hạn chế các ứng dụng thương mại của nó ( Ma và cs., 2024).
2.2. Ức chế Rhizopus stolonifer bằng Polyphenol trà là một phức hợp các hợp chất phenolic trong trà, có tác dụng chống oxy hóa, chống nấm và chống virus, và được sử dụng rộng rãi trong ngành công nghiệp thực phẩm và dược phẩm. Yang và Jiang, 2015 phát hiện ra rằng polyphenol trà có thể can thiệp vào quá trình tổng hợp thành tế bào của Rhizopus stolonifer, phá hủy màng sinh chất, gây ra sự phân giải sợi nấm và bào tử, ức chế sự phát triển của sợi nấm và sự nảy mầm của bào tử theo cách phụ thuộc vào liều lượng, và ức chếbệnh thối mềm quả xuân đào bằng cách gây ra hoạt động chống nấm và hoạt động của enzyme phòng vệ.
2.3. Ức chế Rhizopus stolonifer bằng các hợp chất dễ bay hơi thực vật (VOCs)
Tinh dầu thực vật là các hợp chất thơm tự nhiên và dễ bay hơi, là chất chuyển hóa thứ cấp thu được từ các bộ phận khác nhau của cây. Do đặc tính sinh học của chúng, đặc biệt là đặc tính kháng nấm, chúng có tiềm năng bảo quản các sản phẩm như một giải pháp thay thế cho nhiều chất kháng nấm truyền thống. Oliveira và cs., 2019 đã sử dụng một số loại tinh dầu kết hợp với hydroxymethyl cellulose để ức chế Rhizopus stolonifer trên dâu tây. Trong số đó, 125 μL L −1 tinh dầu Lippia sidoides có thể ức chế hoàn toàn sự phát triển sợi nấm của Rhizopus stolonifer , dẫn đến sự thoái hóa hình thái, tổn thương nghiêm trọng màng plasma và các thành phần nội bào, biểu hiện là các bào quan nội bào bị mờ và mất khung xương tế bào, cho thấy nó có hoạt tính kháng nấm cao theo liều lượng. Phyo và cs.,2023 phát hiện ra rằng thymol và cinnamaldehyde có tác dụng hiệp đồng. Nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) 2 của thymol-cinnamaldehyde có thể ức chế hoàn toàn sự nảy mầm của bào tử Rhizopus stolonifer , làm thay đổi tính thấm của màng tế bào, phá hủy cấu trúc tế bào, ức chế sự phát triển của sợi nấm, và do đó đóng vai trò kháng nấm. Tác dụng ức chế của các hợp chất dễ bay hơi khác của thực vật đối với Rhizopus stolonifer được thể hiện trong Bảng 1.
Bảng 1.Tác dụng ức chế của các hợp chất dễ bay hơi từ thực vật đối với Rhizopus stolonifer
|
Tên
|
Hàm lượng
|
Các thành phần hóa học chính
|
Tác dụng
|
Tài liệu tham khảo
|
|
Tinh dầu đinh hương (Syzygium Aromatum(L.) Merr. & Perr.)
|
200 μL mL−1, ức chế hoàn toàn
|
Eugenol (79,4%), Eugenylacetate (9,2%), Isocaryophyllene (7%)
|
Ức chế đáng kể sự phát triển sợi nấm và sự nảy mầm bào tử củaRhizopus stolonifer theo liều lượng.
|
Sameza và cs., 2016
|
|
Tinh dầu Origanum VulgareL.
|
MIC: 10 μL mL−1
|
Carvacrol (66,01%), Linalool (5,17%), Thymol (3,51%), ο-cymene (3,03%), γ-terpinen (2,54%), Borneol (2,53%)
|
Nó ức chế sự nảy mầm của bào tử, gây ra những thay đổi về hình thái của bào tử và sợi nấm, và làm giảm đáng kể tỷ lệ nhiễm bệnh trên trái cây.
|
Dos Santos và cs., 2012
|
|
Tinh dầuMentha spicata L.
|
MIC: 5 μL mL−1
MFC: 10 μL mL−1
|
Carvone (61,71 %), Limonene (20,22 %), 1,8-cineole (5 %), Sabinene (2,28 %),Cis-dihydrocarvone (1,63 %), α-thujene (1,4 %)
|
95% tỷ lệ nảy mầm bào tử đã bị ức chế, giúp giảm thiểu hiệu quả mức độ nghiêm trọng và tỷ lệ mắcbệnh nhiễm trùng do nấmRhizopus stolonifer gây ra.
|
Oliveira và cs., 2021
|
|
Tinh dầu thì là (Foeniculum vulgare Mill.)
|
800 μL mL−1, ức chế hoàn toàn
|
Anethole (75,15 %), Fenchone (9,37 %)
|
Sự sinh trưởng và nảy mầm bào tử củaRhizopus stolonifer bị ức chế theo liều lượng.
|
Mohammadi và cs.,2014
|
|
Tinh dầuEucalyptus staigeriana F. Muell. ex Bailey
|
1,5 μL mL−1
|
Limonene (14,93 %), α-thujene (11,22 %), Geraniol (8,34 %)
|
Nó tác động lên thành tế bào và màng tế bào, làm thay đổi cấu trúc của sợi nấm, khiến sợi nấm bị mất nước và đứt gãy.
|
Da Silva và cs., 2020
|
|
tinh dầuCitrus sinensis (cam lima)
|
100 μL mL−1
|
Limonene (95,2%)
|
Ức chế sự phát triển sợi nấm củaRhizopus stolonifer theo liều lượng.
|
Rezende và cs., 2020
|
|
Tinh dầuSatureja richingeri
|
500 μL L−1
|
Carvacrol (87,0 %), G-terpinene (4,7 %), P-cymene (1,7 %), Linalool (1,4 %), Limonene (1,2 %), B-bisabolene (1,2 %), Terpinen-4-ol (1,0 %)
|
Nó có tác dụng ức chế đáng kể sự nảy mầm của bào tử và sự phát triển của sợi nấmRhizopus stolonifer , và sợi nấm nhạy cảm hơn bào tử.
|
Safari và cs., 2011
|
|
Tinh dầuCymbopogon citratus (Dc. Ex Nees)
|
MIC: 5 μL mL−1
|
Monoterpenes geranial (đồng phân β-citral) (29,2 %), Neral (đồng phân α-citral) (27,0 %)
|
Nó ức chế sự nảy mầm của bào tử và sự phát triển của sợi nấm bằng cách ảnh hưởng đến tính toàn vẹn của màng sinh chất bào tử.
|
Athayde và cs., 2016
|
|
Tinh dầuRosmarinus officinalis L.
|
1000 μL L−1
|
Long não (15,1%), Verbenone (14,3%), α-pinene (13,6%), 1,8-cineole (11,8%)
|
Cho thấy hoạt tính kháng nấm 100% đối vớiRhizopus stolonifer và làm giảm tỷ lệ hư hỏng trái cây.
|
Naserzadeh và cs., 2019
|
|
tinh dầu húng quế ngọt
|
30 μL 400 mL−1không gian không khí
|
Linalool (55,78%), Eugenol (12,15%), 1,8-Cineol (10,26%), Methyl eugenol (3,79%)
|
Nó thể hiện hoạt tính kháng nấm đối vớiRhizopus stolonifer .
|
Edris và cs., 2023
|
|
Tinh dầu phong lữ
|
0,12% (thể tích/trọng lượng)
|
d-limonene (45,10 %), β-pinene (20,50 %), γ-terpinene (10,59 %)
|
Nó ức chế sự phát triển củaRhizopus stolonifer và giảm tỷ lệ thối rữa đu đủ xuống 40%.
|
Bosquez-Molina và cs., 2010
|
Tinh dầu thực vật có ưu điểm là thân thiện với môi trường, không gây ô nhiễm và an toàn cao, nhưng quy trình chiết xuất phức tạp, một số loại đắt tiền và khó sử dụng với số lượng lớn. Ngoài ra, các thành phần kháng nấm của một số loại tinh dầu thực vật vẫn chưa được biết đến, hầu hết vẫn đang trong giai đoạn nghiên cứu trong phòng thí nghiệm và chưa thể ứng dụng trong thực tế.
3. Ức chế Rhizopus stolonifer bằng vi sinh vật và các chất tiết thứ cấp của chúng
Các phương pháp ức chế vi sinh đề cập đến việc vi sinh vật ức chế hoặc tiêu diệt nấm gây bệnh bằng cách sản xuất một số chất hoạt tính hoặc cạnh tranh với nấm gây bệnh về chất dinh dưỡng. Loại phương pháp này có ưu điểm là không gây ô nhiễm môi trường và không gây ra hiện tượng kháng thuốc, và đã trở thành một điểm nóng nghiên cứu trong những năm gần đây. Zhang và cs., 2019 [đã phát hiện ra rằng các hợp chất hữu cơ dễ bay hơi do Bacillus siamensis G-3 sản xuất có tác dụng ức chế đáng kể 89,4% đối với các bệnh sau thu hoạch của quả mâm xôi do Rhizopus stolonifer gây ra . Pichia Caribbica có thể cạnh tranh với Rhizopus stolonifer về không gian và chất dinh dưỡng, và kích thích hoạt động của các enzyme liên quan đến phòng vệ như peroxidase (POD), catalase (CAT) và phenylalanine ammonia lyase (PAL) ở cây đào để tăng cường khả năng kháng bệnh Xu và cs., 2013. Ngoài ra, Bonaterra và cs., 2003 phát hiện ra rằng Pantoea agglomerans EPS125 làm giảm đáng kể tỷ lệ mắc bệnh và đường kính vết thương của bệnh thối mềm ở đào, xuân đào, mơ và các loại trái cây khác bằng cách tương tác trực tiếp với tế bào Rhizopus stolonifer. Ở nồng độ trung bình, chủng EPS125 rất hiệu quả trong việc ức chếRhizopus stolonifer, và hiệu quả ức chế bệnh thối mềm do Rhizopus stolonifer gây ra nằm trong khoảng từ 49% đến 61%. Tác dụng ức chế của các vi sinh vật khác và chất tiết thứ cấp của chúng đối với Rhizopus stolonifer được thể hiện trong Bảng 2 .
Bảng 2. Tác dụng ức chế của vi sinh vật và các chất tiết thứ cấp của chúng đối với Rhizopus stolonifer.
|
Tên
|
Nguồn gốc
|
Hàm lượng
|
Tác dụng
|
Tài liệu tham khảo
|
|
Pichia guilliermondii
|
Trung tâm Sưu tập Văn hóa
Công nghiệp
Trung Quốc
(CICC
số 32333)
|
1 × 108CFU mL−1
|
Tỷ lệ mắc bệnh ở cây đào có thể giảm hơn 50% bằng cách kích hoạt hoạt động của các enzyme liên quan đến cơ chế phòng vệ, phá hủy cấu trúc thành tế bào, tăng cường cung cấp năng lượng, kích hoạt quá trình trao đổi chất và cải thiện khả năng kháng bệnh.
|
Li và cs., 2023
|
|
Debaryomyce hansenii
|
Bộ sưu tập
văn hóa
tiêu biểu
Trung Quốc
(CCTCC M
2021610 Y3)
|
1x108tế bào mL−1
|
Tỷ lệ nảy mầm bào tử và chiều dài ống mầm củaRhizopus stolonifer bị giảm, đồng thời hoạt động của các enzyme phòng vệ liên quan trong quả được kích hoạt.
|
Zhao và cs., 2022
|
|
Cryptococcus laurentii
|
Quả lê
|
1 × 108CFU mL−1
|
Quá trình nảy mầm của bào tử bị ức chế, và tốc độ phân hủy tự nhiên giảm 70%.
|
Zhang và cs., 2007
|
|
Bacillus cereusAR156
|
Khoa Bảo vệ
Thực vật,
Đại học
Nông nghiệp
Nam Kinh,
Trung Quốc
|
1 × 108CFU mL−1
|
Nó có thể làm giảm tỷ lệ mắc bệnh và đường kính vết bệnh lần lượt là 38,6% và 21,0% sau hai ngày cấy mầm bệnh, đồng thời tăng cường hoạt tính chống oxy hóa của cây đào bằng cách khởi phát phản ứng phòng vệ.
|
Wang và cs., 2013
|
|
Bacillomycin D
|
Bacillus
subtilis
fmbj,
(CGMCC
số 0943)
|
50 mg L−1
|
Nó ức chế sự phát triển của sợi nấm và sự nảy mầm của bào tử, phá hủy cấu trúc màng sinh chất của bào tử và tăng cường khả năng kháng bệnh cho quả.
|
Lin và cs., 2019
|
|
Phong Linh
|
Bacillus
subtilisfmbj, (CGMCC
số 0943)
|
50 μg mL−1
|
Ức chế sự phát triển của sợi nấm và sự nảy mầm của bào tử, dẫn đến rò rỉ protein và axit nucleic, và ở nồng độ thấp gây ra hiện tượng apoptosis (chết tế bào theo chương trình), ở nồng độ cao gây ra hiện tượng hoại tử tế bào.
|
Tang và cs.,2014
|
|
Iturin A
|
Bacillus amyloliquefaciens
LZ-5
|
512 μg mL−1
|
Nó ức chế sự phát triển của sợi nấm và sự nảy mầm của bào tử, phá hủy cấu trúc tế bào, cải thiện khả năng chống chịu của trái cây và giảm tỷ lệ mắc bệnh thối mềm.
|
Jiang và cs.,2021
|
|
Bacteriocin LF-1
|
Lactobacillus plantarum
|
20%
|
Quá trình nảy mầm bào tử của nấmRhizopus stolonifer bị ức chế đáng kể. So với nhóm đối chứng, tỷ lệ nảy mầm bào tử giảm 64,7%, và tỷ lệ hư hỏng của dâu tây cũng giảm.
|
Jia và cs.,2012
|
Ức chế vi sinh vật, dù đầy hứa hẹn, vẫn còn những hạn chế trong ứng dụng thực tiễn. Tác dụng kháng nấm của vi sinh vật phụ thuộc vào trạng thái sinh trưởng của chúng, dẫn đến sự biến đổi về hiệu quả. Hơn nữa, còn tồn tại những thách thức liên quan đến vấn đề an toàn sinh học và yêu cầu đăng ký thương mại. Tất cả những yếu tố này cùng nhau cản trở việc sử dụng rộng rãi các phương pháp ức chế vi sinh vật trong môi trường sản xuất thực tế.
Tài liệu tham khảo
Athayde A.J.A.A., de Oliveira P.D.L., Guerra I.C.D., Da Conceição M.L., de Lima M.A.B., Arcanjo N.M.O., Madruga M.S., Berger L.R.R., de Souza E.L. A coating composed of chitosan and Cymbopogon citratus (Dc. Ex Nees) essential oil to control Rhizopus soft rot and quality in tomato fruit stored at room temperature. J. Hortic. Sci. Biotechnol. 2016;91:582–591.
Bosquez-Molina E., Jesús E.R., Bautista-Baños S., Verde-Calvo J.R., Morales-López J. Inhibitory effect of essential oils against Colletotrichum gloeosporioides and Rhizopus stolonifer in stored papaya fruit and their possible application in coatings. Postharvest Biol. Technol. 2010;57:132–137.
Da Silva P.P.M., de Oliveira J., Biazotto A.D.M., Parisi M.M., Da Glória E.M., Spoto M.H.F. Essential oils from Eucalyptus staigeriana F. Muell. ex Bailey and Eucalyptus urograndis W. Hill ex Maiden associated to carboxymethylcellulose coating for the control of Botrytis cinerea Pers. Fr. and Rhizopus stolonifer (Ehrenb.:Fr.) Vuill. in strawberries. Ind. Crops Prod. 2020;156
Dos Santos N.S.T., Athayde Aguiar A.J.A., de Oliveira C.E.V., Veríssimo De Sales C., de Melo E Silva S., Sousa Da Silva R., Stamford T.C.M., L de Souza E. Efficacy of the application of a coating composed of chitosan and Origanum vulgare L. essential oil to control Rhizopus stolonifer and Aspergillus niger in grapes (Vitis labrusca L.) Food Microbiol. 2012;32:345–353.
Edris A., Farrag E. Antifungal activity of Peppermint and Sweet Basil essential oils and their major aroma constituents on some plant pathogenic fungi from the vapor phase. Nahrung. 2003;47:117–121.
Guerra-Sánchez M.G., Vega-Pérez J., Velázquez-del Valle M.G., Hernández-Lauzardo A.N. Antifungal activity and release of compounds on Rhizopus stolonifer (Ehrenb.:Fr.) Vuill. by effect of chitosan with different molecular weights. Pestic. Biochem. Physiol. 2009;93:18–22.
García-Rincón J., Vega-Pérez J., Guerra-Sánchez M.G., Hernández-Lauzardo A.N., Peña-Díaz A., Velázquez-Del Valle M.G. Effect of chitosan on growth and plasma membrane properties of Rhizopus stolonifer (Ehrenb.:Fr.) Vuill. Pestic. Biochem. Physiol. 2010;97:275–278.
Jiang M., Pang X., Liu H., Lin F., Lu F., Bie X., Lu Z., Lu Y. Iturin A induces resistance and improves the quality and safety of harvested cherry tomato. Molecules. 2021;26:6905.
Jia N., Xie Y.H., Zhang H.X., Liu H., Feng J.J., Zhu L.D., Zhou X.B. Effect of bacteriocin treatment on storage and quality of postharvest strawberry fruit. Adv. Mater. Res. 2012;554–556:1547–1552. doi: 10.4028/www.scientific.net/amr.554-556.1547
Lin F., Xue Y., Huang Z., Jiang M., Lu F., Bie X., Miao S., Lu Z. Bacillomycin D inhibits growth of Rhizopus stolonifer and induces defense-related mechanism in cherry tomato. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2019;103:7663–7674.
Li C., Wang K., Zou Y., Lei C., Chen Z., Zheng Y. Extracellular self-DNA induced a PTI-related local defence against Rhizopus rot in postharvest peach fruit. Postharvest Biol. Technol. 2023.
Ma M., Gu M., Zhang S., Yuan Y. Effect of tea polyphenols on chitosan packaging for food preservation: physicochemical properties, bioactivity, and nutrition. Int. J. Biol. Macromol. 2024;259 doi: 10.1016/j.ijbiomac.2024.129267.
Mohammadi S., Aroiee H., Aminifard M.H., Tehranifar A., Jahanbakhsh V. Effect of fungicidal essential oils against Botrytis cinerea and Rhizopus stolonifer rot fungus in vitro conditions. Arch. Phytopathol. Plant Protect. 2014;47:1603–1610.
Naserzadeh Y., Mahmoudi N., Pakina E. Antipathogenic effects of emulsion and nanoemulsion of cinnamon essential oil against rhizopus rot and grey mold on strawberry fruits. Foods Raw Mater. 2019;7:210–216. doi: 10.21603/2308-4057-2019-1-210-216.
Oliveira J., Parisi M.C.M., Baggio J.S., Silva P.P.M., Paviani B., Spoto M.H.F., Gloria E.M. Control of Rhizopus stolonifer in strawberries by the combination of essential oil with carboxymethylcellulose. Int. J. Food Microbiol. 2019;292:150–158.
Oliveira Filho J., Silva G., Egea M., Azeredo H., Ferreira M. Essential oils as natural fungicides to control Rhizopus stolonifer-induced spoiled of strawberries. Biointerface Res. Appl. Chem. 2021;11:13244–13251.
Palma Guerrero J., Jansson H.B., Salinas J., Lopez Llorca L.V. Effect of chitosan on hyphal growth and spore germination of plant pathogenic and biocontrol fungi. J. Appl. Microbiol. 2008;104:541–553.
Phyo H.M., Ju J., Al-Maqtari Q.A., Yao W. Evaluation of the synergistic antifungal effects of thymol and cinnamaldehyde combination and its mechanism of action against Rhizopus stolonifer in vitro and in vivo. Biocatal. Agric. Biotechnol. 2023;49
Rezende J.L., Fernandes C.C., Costa A., Santos L.S., Vicente Neto F., Sperandio E.M., Souchie E.L., Colli A.C., Crotti A.E., Miranda M.L. Antifungal potential of essential oils from two varieties of citrus sinensis (lima orange and bahia navel orange) in postharvest control of Rhizopus stolonifer (ehrenb.: fr.) vuill. Food Sci. Technol. 2020;40:405–409.
Sameza M.L., Nguemnang Mabou L.C., Tchameni S.N., Boat Bedine M.A., Tchoumbougnang F., Jazet Dongmo P.M., Boyom Fekam F. Evaluation of clove essential oil as a mycobiocide against Rhizopus stolonifer and Fusarium solani, tuber rot causing fungi in yam (Dioscorea rotundata poir.) J. Phytopathol. 2016;164:433–440.
Safari M., Kamaly A., Hadian J., Farzaneh M. Inhibition of spore development and mycelial growth of Rhizopus stolonifer by essential oil of Satureja richingeri from Iran. J. Essent. Oil Res. 2011;23:5–10.
Tang Q., Bie X., Lu Z., Lv F., Tao Y., Qu X. Effects of fengycin from Bacillus subtilis fmbJ on apoptosis and necrosis in Rhizopus stolonifer. J. Microbiol. 2014;52:675–680.
Wang X., Xu F., Wang J., Jin P., Zheng Y. Bacillus cereus AR156 induces resistance against Rhizopus rot through priming of defense responses in peach fruit. Food Chem. 2013;136:400–406.
Xu B., Zhang H., Chen K., Xu Q., Yao Y., Gao H. Biocontrol of postharvest Rhizopus decay of peaches with Pichia caribbica. Curr. Microbiol. 2013;67:255–261.
Zhao L., Lan C., Tang X., Li B., Zhang X., Gu X., Zhang H. Efficacy of Debaryomyce hansenii in the biocontrol for postharvest soft rot of strawberry and investigation of the physiological mechanisms involved. Biol. Control. 2022;174
Zhang H., Wang L., Zheng X., Dong Y. Effect of yeast antagonist in combination with heat treatment on postharvest blue mold decay and Rhizopus decay of peaches. Int. J. Food Microbiol. 2007;115:53–58.
Zhang X., Gao Z., Zhang X., Bai W., Zhang L., Pei H., Zhang Y. Control effects of Bacillus siamensis G-3 volatile compounds on raspberry postharvest diseases caused by Botrytis cinerea and Rhizopus stolonifer. Biol. Control. 2020;141.
Yang X., Jiang X. Antifungal activity and mechanism of tea polyphenols against Rhizopus stolonifer. Biotechnol. Lett. 2015;37:1463–1472.